猪肿瘤浸润组织淋巴细胞分离液试剂盒-细胞生物学检测-试剂-生物在线
北京索莱宝科技有限公司
猪肿瘤浸润组织淋巴细胞分离液试剂盒

猪肿瘤浸润组织淋巴细胞分离液试剂盒

商家询价

产品名称: 猪肿瘤浸润组织淋巴细胞分离液试剂盒

英文名称: Lymphocyte Isolating Liquid Kit for Swine Tumor Infiltration

产品编号: P5960

产品价格: 0

产品产地: 北京市通州区马驹桥联东U谷167A

品牌商标: solarbio

更新时间: 2024-11-26T09:49:39

使用范围: null

北京索莱宝科技有限公司
  • 联系人 : 索莱宝-龚思雨
  • 地址 : 北京市通州区中关村科技园区通州园金桥科技产业基地景盛南四街15号85A三层
  • 邮编 : 101102
  • 所在区域 : 北京
  • 电话 : 178****1073 点击查看
  • 传真 : 点击查看
  • 邮箱 : 3193328036@qq.com
  • 二维码 : 点击查看

猪肿瘤浸润组织淋巴细胞分离液试剂盒 规格:3×200 mL/kit 保存:本产品对光敏感,应该室温避光储存,保质期 2 年。无菌开封后,保存于室温。  组成: 各种动物肿瘤浸润组织淋巴细胞分离液 200mL 全血及组织稀释液 200mL 细胞洗涤液 200mL 淋巴细胞分离方法 1. 制备肿瘤浸润组织的单细胞悬液。 2. 取一支适当的离心管,加入与肿瘤浸润组织单细胞悬液等量的分离液(分离液最少不得少于3mL,总体积不 能超过离心管的三分之二,否则会影响分离效果)。 3. 小心吸取单细胞悬液加于分离液液面上,注意保持两液面界面清晰。(可以使用巴氏德吸管吸取单细胞悬液, 然后小心的平铺于分离液上,因为两者的密度差异,将形成明显的分层界面。) 4. 室温,500~900g,离心20~30min。(根据肿瘤浸润组织单细胞悬液的量确定离心条件,单细胞悬液量越大, 离心力越大,离心时间越长,具体离心条件可以自行摸索,以达到最 佳分离效果)。 5. 离心后,此时离心管中由上至下细胞分四层。第一层为稀释液层;第 二层为环状乳白色淋巴细胞层;第三层为透明分离液层;第四层为红 细胞层。 6. 用吸管小心吸取第二层环状乳白色淋巴细胞至另一洁净的15mL离心 管中,向离心管中加入10ml细胞洗涤液洗涤白膜层细胞,250g,离心 10min。 7. 弃上清,5mL的PBS或细胞清洗液重悬细胞,250g,离心10min。 8. 重复步骤7 9. 弃上清,细胞重悬备用。 肿瘤浸润组织单细胞悬液的制备方法 肿瘤浸润组织研磨的方法: 1. 无菌条件下摘取肿瘤浸润组织,用眼科剪将肿瘤浸润组织剪成小块。 2. 将尼龙筛网或者是细胞过滤筛放置于平皿上,加入少量全血及组织稀释液(保证肿瘤浸润组织及获得的细胞 处于液体环境中)。 3. 将肿瘤浸润组织放置于筛网上,使用注射器活塞或者是无菌镊子来研磨肿瘤浸润组织(尽量控制研磨力度, 保持筛网悬空,避免在皿底上直接研磨而造成大批细胞死亡) 4. 研磨完全后使用全血及组织稀释液冲洗筛网,收集细胞悬液,再经滤网过滤。 分层示意图  注: A. 可用酶消化法,使用胶原酶对肿瘤浸润组织组织进行消化,得到单细胞悬液。 B. 如果最终得到的细胞需要培养,那全过程所需试剂与器材均要求无菌。 C. 根据肿瘤浸润组织的体积控制单细胞悬液的浓度在1亿~10亿个/ml。 注意事项: A. 开封前颠倒混匀,本分离液为无菌产品,为延长分离液保存时间,请在无菌条件下启封,避免微生物污染。 B. 分离液使用时应始终保持室温(18℃~25℃),如室内温度较低,可将分离液预热。4℃或者是温度较低的条 件下离心,可能会导致白膜层中红细胞污染加重。 C. 待分离的组织要求新鲜,避免冷冻和冷藏。 D. 部分塑料制品(如聚苯乙烯)因其带有的静电作用,可能会导致细胞挂壁,影响分离效果。 E. 如果要进一步对分离的细胞进行培养,那在制备单细胞悬液和分离过程中,注意无菌操作,避免微生物污染。  参考文献: 1. Boyum A. Separation of leucocytes from blood and bone marrow. Scand J Clin Lab Invest Suppl. 1968; 97: 7.  2. Ting A, Morris PJ. A technique for lymphocyte preparation from stored heparinized blood. Vox Sang. 1971 Jun; 20(6): 561-3.  3. Boyum A. Separation of Blood Leucocytes, Granulocytes and Lymphocytes Tissue Antigens. 1974; 4(4): 269-74.  4. Weisbart RH, Webb WF, Bluestone R, Goldberg LS. A simplified method for lymphocyte separation. Vox Sang. 1972; 23(5): 478-80.  5. Recalde HR. A simple method of obtaining monocytes in suspension. J Immunol Methods. 1984 Apr 13;69(1):71-7.  6. BøyumA,LøvhaugD,TreslandL.Separation of leucocytes: improved cell purity by fine adjustments of gradient mediu m density and osmolality. Scand J Immunol. 1991 Dec; 34(6):697-712.  7. Harris R, Ukaejiofo EO. Tissue typing using a routine one-step lymphocyte separation procedure. Br J Haematol. 1970 Feb; 18(2):229-35.  相关产品: R1018 细胞洗涤液 S9020 优级胎牛血清 R1017 全血及组织稀释液 31800 RPMI Medium 1640 T1300 胰蛋白酶-EDTA消化液(0.25%)不含酚红 YA0902 一次性巴氏德吸管 各种其他动物及其他细胞的分离液及试剂盒